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細(xì)胞傳代實(shí)驗的操作步驟

更新時間:2024-05-31      點(diǎn)擊次數(shù):486

實(shí)驗原理


培養(yǎng)細(xì)胞傳代根據(jù)不同細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長的細(xì)胞用消化法傳代;部分貼壁生長的細(xì)胞用直接吹打可傳代;懸浮生長的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打傳代。


實(shí)驗材料 細(xì)胞


試劑、試劑盒 D-Hanks液、小牛血清、RPMI1640、雙抗、胰蛋白酶、EDTA、NHCl、NaHCO3


儀器、耗材 凈化工作臺、離心機(jī)、恒溫水浴箱、冰箱、倒置相差顯微鏡、培養(yǎng)箱、吸管、玻璃瓶、培養(yǎng)瓶、吸頭、槍頭、膠塞、離心管、量加樣槍、廢液缸、紅血球計數(shù)板

QQ圖片20240415142943.png


實(shí)驗步驟


1.  貼壁細(xì)胞的消化法傳代:


(1)吸除或倒掉瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液。


(2)D-Hanks液洗2~3次。


(3)向瓶內(nèi)加入適量消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養(yǎng)瓶,使消化液流遍所有細(xì)胞表面。


(4)然后吸掉或倒掉消化液后再加適量新的消化液,輕輕搖動再倒掉大部分消化液,僅留少許進(jìn)行消化(也可不采用上述步驟直接加消化液進(jìn)行消化)。


(5)消化最好在37℃或室溫25℃以上環(huán)境下進(jìn)行。


(6)消化2~5 min 后把培養(yǎng)瓶放置顯微鏡下進(jìn)行觀察,發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)回縮,細(xì)胞間隙增大后,應(yīng)立即終止消化。


(7)吸除或倒掉消化液,如用EDTA消化,需加Hanks液數(shù)毫升,輕輕轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶把殘留消化液沖掉。


(8)再加培養(yǎng)液。如僅用胰蛋白酶可直接加少許含血清的培養(yǎng)液,終止消化。


(9)用彎頭吸管,吸取瓶內(nèi)培養(yǎng)液,反復(fù)吹打瓶壁細(xì)胞,吹打過程要順序進(jìn)行。


(10)從培養(yǎng)瓶底部一邊開始到另一邊結(jié)束,以確保所有底部都被吹到,使細(xì)胞脫離瓶壁后形成細(xì)胞懸液。吹打時動作要輕柔不要用力過猛。  


(11) 計數(shù),分別接種在新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。


2.  懸浮細(xì)胞的傳代:懸浮細(xì)胞傳代可離心收集細(xì)胞后傳代,或直接傳代。


離心傳代法:


(1) 將細(xì)胞連同培養(yǎng)液一并轉(zhuǎn)移到15 ml 離心管內(nèi)。


(2) 離心800~1000 rpm,5 min。


(3) 棄去上清,加新的培養(yǎng)液到離心管內(nèi),用吸管吹打形成細(xì)胞懸液。


(4) 計數(shù),分別接種在新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。 


(5)直接傳代即讓懸浮細(xì)胞慢慢沉淀在瓶底后,將上清液吸掉1/2~2/3,然后用吸管吹打形成細(xì)胞懸液后再傳代。


3.  部分貼壁細(xì)胞的傳代


(1)部分貼壁不牢的細(xì)胞,如Hela細(xì)胞等,不經(jīng)消化處理直接吹打可使細(xì)胞從壁上脫落下來,而進(jìn)行傳代。


(2)對絕大部分貼壁生長的細(xì)胞,因直接吹打?qū)?xì)胞損傷較大,細(xì)胞常有較大數(shù)量的丟失,因而需消化后,才能吹打傳代。


注意事項


1.  胰蛋白酶要預(yù)溫,溫度37℃左右為宜℃。


2.  離心轉(zhuǎn)速要合適,轉(zhuǎn)速過低,不能有效分離細(xì)胞,離心速度過大,時間過長,會擠壓細(xì)胞造成損傷甚至死亡。


3.  要定時觀察細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)污染,應(yīng)及時處理。


發(fā)布人:上海雅吉生物科技有限公司


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